Influencia de Distintas Ingestas de Macronutrientes Sobre la Resíntesis de Glucógeno Muscular Luego del Entrenamiento de Sobrecarga

INTRODUCCION

Se sabe que la suplementación nutricional después de la realización de
ejercicios de resistencias aumenta la tasa de resíntesis de glucógeno muscular
(6, 7). Sin embargo, se han llevado a cabo muy pocas investigaciones acerca del
rol de la suplementación nutricional después del ejercicio de sobrecarga
muscular (14). De manera similar al ejercicio de resistencia, el ejercicio de
sobrecarga produce una disminución significativa del glucógeno muscular (10, 16,
20). Sin embargo, la magnitud de esta disminución no es tan grande como la
observada con el ejercicio resistencia (19). Previamente se ha investigado la
influencia de la suplementación con carbohidratos (CHO) luego del entrenamiento
de sobrecarga (14) y se ha observado que la suplementación con CHO produce tasas
de resíntesis glucogénica similares a las observadas luego del ejercicio de
resistencia (14). Sin embargo, otros investigadores han observado mayores tasas
de resíntesis de glucógeno muscular y mayores niveles plasmáticos de insulina
con el consumo de un suplemento a base de CHO/proteínas (Pro) después del
ejercicio de resistencia (21). Los suplementos no isoenergéticos administrados
en este último estudio, hacen que la interpretación de estos últimos resultados
sea difícil; sin embargo, sugieren que los suplementos a base de Pro y CHO son
más eficaces para promover la resíntesis de glucógeno que los suplementos a base
de CHO solamente.

La mayor tasa de resíntesis glucogénica en el estudio llevado a cabo por
Zawadszki et al (21) fue atribuida a la mayor liberación de insulina plasmática
que se ocurrió con el consumo del suplemento a base de CHO/Pro. La liberación de
insulina es estimulada principalmente por los CHO; sin embargo, también se ha
demostrado que las proteínas también estimulan su liberación. (13). Hay
evidencias que sugieren que el consumo conjunto de CHO y Pro, podrían producir
una mayor respuesta de la insulina plasmática (18, 21).

Una tasa más rápida de recuperación del glucógeno muscular puede ser
beneficiosa para un individuo que realiza múltiples rutinas por día. Además, una
mejor respuesta insulínica post-esfuerzo sería útil para un deportista que
realiza ejercicios de sobrecarga, ya que podría atenuar la degradación de
proteínas musculares (17), y/o aumentar la síntesis de proteínas musculares.

Por lo tanto, el propósito de esta investigación fue determinar los efectos
de las ingestas de macronutrientes sobre la respuesta isulínica y la tasa de
resíntesis de glucógeno muscular, después de una sesión de entrenamiento de
sobrecarga con el control de la ingesta calórica durante 24 hs.

METODOS

Sujetos

Diez varones jóvenes (19-21 años) fueron reclutados y evaluados para asegurar
que estuvieran sanos, y que habían estado participando en un programa de
entrenamiento de sobrecarga durante al menos 2 años antes de esta investigación
(4 veces/semana; Tabla 1). Antes de la inclusión en el estudio, se evaluaron los
diarios de entrenamiento de los sujetos para certificar que no habían ocurrido
recientes mejoras significativas en la fuerza o alteraciones en el
entrenamiento. También se les pidió a los sujetos que no cambiaran su
entrenamiento durante la duración del estudio. A cada sujeto se le explicaron
los procedimientos experimentales, los riesgos, y los beneficios asociados con
la participación en el estudio, antes de obtener su consentimiento por escrito.
Los procedimientos fueron aprobados que el Comité de Ética para la utilización
de Sujetos Humanos de la Universidad McMaster.

Tabla 1. Datos descriptivos de los sujetos y características de la dieta
habitual. El % de grasas fue calculado de acuerdo a W.E. Siri. The Gross
Composition of the Body. New York: Academic, 1956, Vol. IV, p 239, (Adv. Biol.
Med Physics Ser.). Entr.=Años de entrenamiento de sobrecarga; CHO=
Carbohidratos; Pro= Proteínas.

Diseño

Los sujetos participaron en una serie de pruebas doble ciego, con grupo
control con placebo. Todos los sujetos completaron cada una de las siguientes
condiciones: CHO/Pro/grasas (~66% de CHO, ~23% de Pro, y ~11% grasas; bebida
deportiva comercialmente disponible, Mead-Johnson, Canadá; fuente de CHO: 56% de
sucrosa – 44% de polímero de glucosa a partir de melazas de maíz sólidas), CHO
solamente (misma fuente de CHO que en CHO/Pro/grasas), y placebo (Pl; sucralosa,
derivados de la sucrosa no reconocidos como CHO por el organismo). Todas las
series estuvieron separadas por un mínimo de 2 semanas. La secuencia de las
pruebas fue aleatoria pero, por error, el técnico que controló el estudio ciego
tuvo a todos los sujetos participando en cada condición en la misma secuencia.
Sin embargo, tanto los sujetos como los otros investigadores no supieron la
distribución de los suplementos (doble ciego).

Antes de las pruebas experimentales, se determinó la fuerza de los sujetos en
una repetición máxima en ocho ejercicios diferentes (ver más adelante), y se
determinó la densidad corporal a través del peso hidrostático.

Además, se registraron las ingestas nutricionales de 4 días, que fueron
analizadas a través de un software para el análisis nutricional (Nutritionist IV,
First Data Bank, San Bruno, CA). A partir de esto, se diseñaron dietas
individuales para cada sujeto para los 3 días previos a cada prueba (listado
alimentario) y para el mismo día de la serie (dieta pre-envasada). Las dietas
eran isoenergéticas, isonitrogenadas, y libres de carne. La composición de la
dieta pre-envasada variaba de acuerdo a la bebida post-esfuerzo administrada
(Tabla 2). La ingesta calórica diaria total se mantuvo constante durante las
tres pruebas (Tabla 3). La ingesta calórica post-esfuerzo para las pruebas CHO/Pro/grasas
y CHO fue la misma, y sólo varió la composición de macronutrientes (Tabla 2).
Las calorías y macronutrientes proporcionados por las bebidas con fórmula pre-definida
reemplazaron parte de la ingesta habitual de los sujetos. Además, la cantidad de
calorías y macronutrientes proporcionados por las bebidas fue la misma para cada
prueba experimental. Esto fue logrado a través de la administración de una
bebida consumida conjuntamente con el desayuno (Tabla 2).

Los sujetos se abstuvieron de realizar ejercicios de sobrecarga en los 3 días
previos a cada prueba experimental y de realizar cualquier tipo de ejercicio en
los 2 días previos. Los sujetos ingirieron los alimentos a las 8.00, 11.00, y
14.00 hs (Tabla 3) y se presentaron en el laboratorio a las 17.00hs (t = – 1.25
h). Un catéter de calibre 22 era insertado en la vena antecubital, y se
recolectaba una muestra de sangre (t = -1.25 h; Figura 1). Posteriormente los
sujetos llevaban a cabo la serie de ejercicios bajo supervisión. El ejercicio
consistió de una rutina en circuito para todos los grupos musculares utilizando
un aparato multi-estación Global Gym. Cada rutina constaba de tres series de
cada uno de los siguientes ejercicios: press de banca, abdominales, extensiones
de rodilla, tirones en polea, curl de bíceps, prensa de piernas, extensiones de
codo, press militar, y una serie adicional de extensiones de rodilla. Los tres
ejercicios de piernas fueron realizados unilateralmente de manera que, durante
la serie Pl, el músculo de la extremidad no activa sirvió de control [pierna
activa (Ex) y control (Con)]. Los sujetos realizaron 20 abdominales y para todos
los otros ejercicios, tres series de 10 repeticiones al 80% de 1 RM. Durante la
sesión de ejercicios de la primera prueba experimental, los sujetos pudieron
beber agua a voluntad pero se requirió que consumieran exactamente la misma
cantidad en las dos pruebas siguientes. Al finalizar el ejercicio (t = 0 hora),
se recolectaba una muestra de sangre, y se llevaba a cabo una biopsia muscular
del vasto lateral de la pierna Ex usando la técnica de succión modificada de
Bergström, y se suministraba una de las bebidas [CHO/Pro/grasas (Prueba 1), CHO
(1gr/kg; Prueba 2), y placebo (Prueba 3; t = 0 h)]. Se recolectaron muestras de
sangre cada 20 minutos durante las siguientes 2 hs y 40 minutos. También se
recolectaron muestras sanguíneas adicionales a las 4, 4.25, y 4.5 hs
post-esfuerzo. Una segunda bebida era suministrada a la hora post-esfuerzo
(igual a la de t = 0 h), y una segunda biopsia se obtenía a las 4 hs
post-esfuerzo.

Todas las muestras de sangre fueron recolectadas en tubos pre-enfriados,
heparinizados, y centrifugadas inmediatamente. El plasma fue almacenado a -50ª C
para el posterior análisis de lactato, glucosa, e insulina (ver abajo). Todas
las biopsias fueron diseccionadas libres de tejido conectivo visible, colocadas
en nitrógeno líquido, y almacenadas a -50º C para el análisis posterior del
glucógeno muscular (ver abajo).

Tabla 2.Distribución de los suplementos nutricionales para cada serie.
Post-ejercicio = suplemento dado a t = 0 hora y t = + 1 hora post-esfuerzo. Pl =
placebo; D = desayuno; A= almuerzo; M = merienda.

Tabla 3. Ingesta nutricional diaria para cada serie. NS= no
significativo.

Análisis

Plasma. Todas las muestras de plasma fueron analizadas para determinar
la concentración de insulina a través de radioinmunoensayo (Diagnostic Products,
Los Angeles, CA). El coeficiente de variación (CV) intra-ensayo fue del 3.2%.
Además, también se determinó la concentración de glucosa en cada muestra (Sigma
Diagnostics, Kit 135, St. Louis, MO) con un CV intra-ensayo de 3.5%.

La concentración plasmática de lactato fue determinada en las muestras
recolectadas con los sujetos en reposo, y en las muestras recolectadas
inmediatamente post-esfuerzo. El Lactato plasmático fue determinado en duplicado
utilizando un analizador de lactato YSI 23L (Yellow Springs Instruments, Yellow
Springs, OH).

Glucógeno Muscular. Antes del análisis, las muestras musculares fueron
liofilizadas, pulverizadas, y cualquier partícula visible de sangre o tejido
conectivo era removida antes de pesarlas. La concentración de glucógeno fue
determinada con un método adaptado al descrito por Bergmeyer (2).Brevemente, se
agregaban 160 μL de NaOH a 2.0-2.4 mg de tejido muscular seco y se mezclaba
completamente. Luego de la incubación a 80º C durante 10 min, se agregaban 640
μL de una solución combinada ácido – buffer (HCl-citrato) para neutralizar la
muestra. Luego se agregaba amiloglucosidasa (40 μL; Sigma Chemical, St. Louis,
MO) y la muestra era mezclada y estacionada durante 80 min. Luego se agregaban
80 μL de una solución reactiva
é375 mM
de trietanolamina, 150 mM KOH, 112.5 mM Mg (Ac)₂ • 2H₂O, y
3.75 mM de Na₂EDTA • 2H₂Où,
5 μL de una solución de ATP (45 mM), 5 μL de una solución de ditiotreitol (60 mM)
y 10 μL de una solución de NAD (30 mM). Las mediciones de la absorbancia de base
fueron realizadas con un espectrofotómetro ultravioleta a 340 nm (modelo
Shimadzu 1202, Japón). Se agregó una solución de glucosa-6-fosfato dehidrogenasa-hexoquinasa
(4 μL; 200 U de glucosa-6-fostato dehidrogenasa y 200 U de hexoquinasa disuelta
en 800 μL de 2,3- dideoxiinosina, Sigma Chemical). La absorbancia a 340 nm luego
fue medida 15 min después de la adición de la solución de enzimas. La
absorbancia de base fue luego restada de la absorbancia de reacción, y el valor
obtenido fue graficado contra una curva estándar de glucógeno (Sigma Chemical)
para la determinación de la concentración de glucógeno. Las concentraciones de
glicógeno muscular se presentan en milimoles de glucógeno por kilogramo de peso
muscular seco.

Cálculos

La tasa promedio de resíntesis del glucógeno muscular fue calculada a partir
de la tasa = (G post – G pre)/t, donde G pre es la concentración de glucógeno
muscular inmediatamente post-esfuerzo, G post es la concentración glucogénica 4
hs después del ejercicio, y t es el tiempo entre las dos biopsias.

Figura 1. Diseño experimental para cada día de evaluación.

Análisis Estadísticos

Los datos de las variables musculares y sanguíneas fueron analizados
utilizando el análisis de varianza para medidas repetidas (ANOVA; tiempo ×
tratamiento; Statistica, versión 5.0, StaSoft, Tulsa, OK). Cuando ocurría una
interacción significativa, se usaba análisis post hoc de Tukey para localizar
las diferencias apareadas. Los cálculos del área integrada bajo la curva fueron
llevados a cabo utilizando un programa especial especial. Los datos del área
bajo la curva fueron analizados usando el análisis de varianza ANOVA de una vía,
para mediciones repetidas. Un valor de p<0.05 se consideraba indicativo de significancia estadística. Los valores se expresan como medidas ± EE.

RESULTADOS

El estímulo del ejercicio produjo aumentos similares en la concentración
plasmática de lactato en las tres condiciones (Figura 2).

Figura 2. Lactato plasmático antes (Pre) y después (post) del ejercicio.
CHO = carbohidratos; Pro = proteínas.

Tanto en la prueba CHO/Pro/Grasas como en la pruebas CHO se observaron
concentraciones iniciales de glucosa plasmática significativamente mayores
(p<0.05). En las tres condiciones, el ejercicio resultó en un nivel ligeramente mayor (no significativa) de glucosa plasmática (Figura 3A). El consumo de
CHO/Pro/grasas resultó en una concentración de glucosa significativamente mayor
a los 20, 40, 80, 100, 120, 140, y 160 min post-esfuerzo en comparación con la
condición Pl (p<0.01; Figura 3A). La prueba con CHO produjo una respuesta
de la glucosa similar a la prueba con CHO/Pro/grasas, con incrementos
significativos a los 20, 40, 60, 100, 120, y 140 min post esfuerzo versus la
condición Pl (p<0.01; Figura 3A). El área bajo la curva de glucosa no fue
significativamente diferente entre las pruebas CHO/Pro/grasas y CHO (CHO/Pro/grasas
= 5.87 ± 0.27 mM/h y CHO = 5.59 ± 0.35 mM/h), pero fueron mayores en comparación
con Pl (p<0.01, Figura 4A).

Figura 3. A) Concentración de glucosa plasmática; B) Concentración de
insulina plasmática. *Diferencia significativa (p<0.05) entre las pruebas CHO/Pro/grasas y placebo (Pl). (†) Diferencia significativa (p<0.05) entre las pruebas CHO y Pl.

No hubo diferencias en las concentraciones de insulina plasmática entre las
series tanto al comienzo del ejercicio (t = – 1.5 h) como al final del mismo (t
= 0 h), y al momento de la segunda biopsia muscular (t = 4 h). Las
concentraciones plasmáticas de insulina fueron significativamente mayores en la
prueba CHO/Pro/grasas que en la prueba Pl a los ± 20, ± 80, ± 100, y ± 120 min
post-esfuerzo (Figura 3B; p<0.01). De forma similar, la condición CHO elevó significativamente las concentraciones de insulina en plasma a los ± 20, ± 40, ± 60, ± 80, ± 100, ± 120, y ± 140 min., en comparación con Pl (Figura 3B;
p<0.01). El área bajo la curva de insulina fue aproximadamente tres veces mayor tanto para la condición CHO/Pro/grasas como para la condición CHO vs la condición Pl (p<0.01; CHO/Pro/grasas = 28.9 ± 2.7 μIU/h/L CHO = 33.6 ± 4.6 μU/h/L, Pl = 10.1 ± 1.2 μIU/h/L; Figura 4B).

Inmediatamente después del ejercicio, las concentraciones de glucógeno
muscular en las tres condiciones fueron significativamente menores (pero no
diferentes entre las pruebas) que en la pierna Con que no realizó ejercicio
(p<0.05; CHO/Pro/grasas = 220.3 ± 26.5 mmol/kg de músculo seco; CHO = 235.1 ± 27.7 mmol/kg de músculo seco; Pl = 247 ± 22.9 mmol/kg de músculo seco; Con = 352.3 ± 32.04 mmol/kg de músculo seco; Figura 5A). Esto sumo una
disminución promedio del 36% del glucógeno muscular en el vasto lateral
[comparando el glucógeno post-esfuerzo en las 3 condiciones vs el glucógeno en
Pl-Con (pierna pasiva)].

Figura 4. A) Área bajo curva para la glucosa; B) Área bajo la curva para
la insulina. (*) Diferencia significativa (p<0.05) entre las condiciones.

Tanto para la condición CHO/Pro/grasas como para la condición CHO, la
concentración de glucógeno muscular fue significativamente mayor después de 4 hs,
en comparación con el momento inmediatamente post-esfuerzo (p<0.05; Figura 5A;
CHO/Pro/grasas = 220.3 ± 26.5 a 312.2 ± 23.0 mmol/kg de músculo seco; CHO =
235.1 ± 27.7 a 312.2 ± 38.8 mmol/kg de músculo seco). Sin embargo, el
tratamiento de Pl no produjo ningún incremento en la concentración de glucógeno
muscular después de 4 hs, ni en la pierna Ex ni en la pierna Con (Figura 5A;
Pl: Ex = 247.6 ± 22.9 a 255.7 ± 27.5 mmol/kg; Con = 352.3 ± 32.0 a 367.5 ± 43.0
mmol/kg). Tanto la condición CHO/Pro/grasas como la condición CHO generaron una
tasa significativamente mayor de resíntesis de glucógeno muscular en comparación
con la condición Pl: Ex: = 2.0 ± 2.3 mmol/kg/hora, Con = 3.8 ± 4.7 mmol/kg/hora).

Figura 5. A) Concentración de glucógeno muscular para las distintas
condiciones alimentarias (CHO/Pro/grasas, CHO, Pl) y para la pierna en ejercicio
vs control (pierna en reposo) en la condición Pl; B) tasas promedio de
resíntesis de glucógeno muscular en las primeras 4 hs, después del ejercicio.
(*)Diferencias significativas (p<0.05).

DISCUSION

El propósito de estas investigaciones era determinar los efectos de la
ingesta calórica de distinta composición de macronutrientes sobre la resíntesis
de glucógeno muscular después de una serie de ejercicios de resistencia para el
cuerpo. Este es el primer informe que ha comparado distintas ingestas de
macronutrientes después del ejercicio, controlado además la ingesta calórica de
suplementos y la ingesta calórica diaria total en la condición placebo. Como se
demostró previamente en el ejercicio de resistencia, los suplementos con CHO (1
mg/kg dado a las 0 ± 1 hora post post-esfuerzo) produjeron un aumento
significativo de la glucosa e insulina plasmáticas (17). De manera similar, la
condición CHO/Pro/grasas en este estudio llevó a incrementos parecidos, tanto en
la glucosa como en la insulina en plasma, así como con CHO solo. Esto sugiere
que CHO/Pro/grasas fue un estímulo similar para la liberación de insulina que
CHO solo. Los aumentos de glucosa e insulina observados en el presente estudio
fueron similares a los observados por otros investigadores luego del ejercicio
de “endurance” (8,9) tanto como de resistencia muscular (17).

Tanto CHO/Pro/grasas como CHO resultaron en tasas similares de resíntesis de
glucógeno muscular. Estas fueron considerablemente mayores que las observadas
para la condición Pl (piernas Ej + Con). Las tasas de resíntesis luego del
ejercicio de “endurance” (21). En el estudio de Zawadzki y cols. (21) se observó
que la combinación de un suplemento con CHO/Pro producía una tasa mayor de
resíntesis glucogénica que CHO o Pro solo9s. Sin embargo, este suplemento
combinado de CHO/Pro fue el suplemento individual con CHO agregado al suplemento
con Pro, resultando, por lo tanto, en un suplemento con un contenido calórico
42% mayor. La observación que las condiciones isoenergéticas en el presente
estudio resultaran en similares tasas de resíntesis glucogénica sugiere que el
total de calorías consumidas post-esfuerzo también es un factor importante en la
resíntesis de glucógeno. Las menores tasas de resíntesis observadas con la
condición Pl demostraron la importancia de la ingesta calórica y de
macronutrientes después del ejercicio de resistencia muscular.

Podría haberse dado la posibilidad de un efecto de orden en el presente
estudio debido a un error inadvertido en el ordenamiento de los suplementos por
parte del asistente de investigación que controló el nivel ciego del estudio.
Sin embargo, hay diversos factores que indican que ésto no fue así y que no
influyó en los resultados. En primer lugar, debido a que los sujetos estaban
altamente entrenados, fue poco probable que haya habido desarrollos
significativo en la fuerza entre cada serie, y no hubo razones para cambios
sistemáticos en el entrenamiento en ninguna dirección. En segundo lugar, cada
sujeto desarrollo la misma cantidad de trabajo para cada condición. En tercer
término, se observó un incremento similar en los valores de lactato plasmático
desde el pre-ejercicio al post-esfuerzo para las tres condiciones (Figura 2).
Cuarto, la concentración de glucógeno muscular de la pierna en ejercicio
inmediatamente post-esfuerzo fue la misma para ejercicio inmediatamente
post-esfuerzo fue la misma para las tres condiciones (Figura 5A).Además,
lo más importante, tanto los investigadores como los sujetos no tuvieron
conocimiento de la alocación de los suplementos (doble ciego). Todo lo
mencionado anteriormente respalda la poca posibilidad de un efecto de orden.

Una observación no esperada en el presente estudio fueron las concentraciones
basales significativamente diferentes de glucosa plasmática (inferiores para Pl).
Es poco probable que esta diferencia sea indicadora de diferencias en el consumo
de CHO dentro de las tres horas de cada serie causada por las concentraciones
casi idénticas de la insulina en los controles alimentarios. Nosotros hemos
observados una tendencia parecida en un estudio similar con ejercicios de “endurance”,
lo cual podría tener relación con una relativa hipoglucemia de “rebote” para la
condición Pl (mayor consumo de CHO con el desayuno) y/o un incremento en el
suministro gluconeogénico para las condiciones CHO (Pro/grasas y CHO, debido a
la menor ingesta calórica total antes en el día.

Las tasas de resíntesis de glucógeno muscular fueron mayores en el presente
estudio para las condiciones CHO/Pro/grasas y de CHO, luego del ejercicio de
resistencia que las observadas por otro para CHO solo (14) pero son similares
alas tasas observados con el consumo de CHO después de un ejercicio de alta
intensidad (11). Estas diferencias probablemente fueron causadas por diferencias
en el nivel de entrenamiento del sujeto. En el presente trabajo, se estudiaron
atletas de resistencia muscular altamente entrenados, mientras que los sujetos
en el estudio de pascoe y cols. (14) no estaban entrenados. La diferencia entre
individuos entrenados y no entrenados probablemente esta relacionado con la
sensibilidad a la insulina y el contenido de GLUT- 4 dentro del músculo (15).
Sea demostrado que los deportistas presentan una mayor sensibilidad a la
insulina en comparación co controles sedentarios (5). Esta mayor sensibilidad
parece estar relacionada con el contenido de GLUT- 4 en el músculo (15). Es
probable que el entrenamiento de resistencia muscular también incremente la
presión de GLUT-4, aumentando, por lo tanto, la capacidad de transporte de
glucosa en la célula e incrementando sensibilidad a la insulina de las células.
Un mayor respaldo para esta explicación es la correlación positiva que se a
observado entre contenido de GLUT- 4 y la tasa de resístensis de glicógeno
muscular luego del ejercicio de “endurance” (12).

En el presente estudio las concentraciones de insulina plasmática fueron
similares tanto para la serie con CHO/Pro/grasas con CHO. Esto no es consistente
con n trabajo previo en esta área (21). La poca diferencia en la concentración
de insulina entre CHO/Pro/grasas y CHO del presente estudio, probablemente esté
relacionada con la naturaleza isocalórica de las condiciones. Por lo tanto,
parece que la liberación de insulina no se potencia con CHO/Pro en comparación
con CHO solo, después de un ejercicio de resistencia muscular. Sin embargo, el
contenido de Pro podria ser importante para el deportista de resistencia por
cuanto parece que la hiperinsulinemia es lo mas efectivibo para promover la
síntesis de proteínas musculares en presencia de hiperaminoacidemia (1).

Hay datos que demuestran que la co-ingesta tanto de grasas como de Pro podria
influir en la respuesta metabólica al CHO (4, 21); sin embargo, la respuesta
insulínica en el presente estudio no sugiere tal interacción. Se debe mencionar
que el contenido de grasas en la condición CHO/pro/grasas fue mínimos (11% de
las calorías totales consumidas). Por ejemplo un individuos de 80kg habría
consumido <4grde grasas con cada con cada bebida post-esfuerzo. Esta cantidad tan pequeña es probable que no produjera demasiada influencia sobre el metabolismo de los CHO. A habidos reportes en la literatura de cantidades aun mayores de consumo total de grasas (31% de la ingesta calórica total) durante un periodo de 24 hs que no han tenido ningún efecto sobre la cantidad total de resíntesis del glucógenos muscular después del ejercicio, en comparación con CHO solo (3). Por lo tanto, nosotros creemos que el componente graso de la condición CHO/Pro/grasas tuvo poca influencia sobre el almacenamiento de glucógeno muscular y la respuesta a los suministros de CHO.

Se observaron disminuciones significativas en el glucógeno muscular en el
presente estudio luego del ejercicio de resistencia muscular. Las tres series de
tres ejercicios diferentes de extensión de rodilla en el presente protocolo
produjeron una disminución del 36% en el glucógeno muscular. Otros autores (10,
14, 16, 20) también han observado disminuciones significativas del glucógeno
muscular luego del ejercicio de resistencia. La disminución en el presente
estudio fue similar a la observada por otros investigadores cuando son
considerados tanto la intensidad como el volumen del ejercicio. En el período de
tiempo de 4 hs luego de la finalización del ejercicio, hubo muy poca resíntesis
de glucógeno muscular en la condición Pl. Esto indica que la ingesta alimentaria
es importante en la resíntesis glucogénica luego del ejercicio de resistencia.
Además demuestra que durante este tiempo hubo sólo una muy pequeña contribución
para la resíntesis glucogénicas a partir del aporte de los precursores
gluconegénicos al hígado, y consecuente liberación de glucosa hepática en la
condición Pl. La gluconeogénesis hepática podría haber contribuido
indirectamente a la resíntesis glucogénica, a través de ciclo glucosa-alanina en
la serie con CHO(Pro/grasas. Es posible que tanto el componente proteico como
graso contribuyeran a los precursores gluconeogénicos en la circulación
aumentando, por lo tanto, los sustratos disponibles para la gluconeogénesis en
el hígado. Nosotros sólo podemos especular con esta posibilidad, ya que no se
realizaron mediciones de los aminoácidos plasmáticos o de glicerol. Además, la
contribución relativa de la gluconeogénesis, probablemente, haya sido minimizada
en las series con CHO/Pro/grasas y CHO por la elevación de la insulina
plasmática y una esperada disminución del glucagón plasmático.

Los resultados del presente estudio tienen una importante directa para los
individuos o deportistas que realizan series múltiples de ejercicio en un día
determinado y/o para individuos con muy bajas ingestas calóricas (por ej.,
físicoculturistas antes de las competiciones). Por ejemplo, las personas que
realizan series múltiples de ejercicio en un mismo día podrían asegurar un
adecuado aporte de glucógeno muscular para series posteriores de ejercicio con
el consumo de suplementos luego del ejercicio podría tener una influencia
positiva sobre el metabolismo de las proteínas (17), lo cual requiere mayor
investigación.

En síntesis, nuestro resultados indican que el consumo de 1 gr/kg de CHO o de
CHO/pro/grasas de igual contenido calórico inmediatamente y 1 hora después de la
finalización de un entrenamiento de resistencia, aumentó significativamente la
tasa de resíntesis de glucógeno muscular durante las primeras 4 hs luego de la
finalización del ejercicio, en comparación con un placebo. Esto sugiere que el
contenido calórico total y el contenido de CHO son importantes para la
resíntesis glucogénica.

Agradecimientos

Los autores agradeces a Scott MacKenzie, Joan Martin, Jonathon Fawles, y Dan
McLennan por su ayuda técnica y a los Dres. S. Atkinson. D. MacDougall, y D.
Sale por sus comentarios sobre el manuscrito. Este estudio fue respaldado
financieramente por una beca de Mead-Johnson, Canadá.

Dirección para el pedido de reimpresiones y otra correspondencia: A.
Tarnopolsky, Dept. of Kinesiology and Medicine, Rm. 205, Ivor Wynne Center,
McMaster University, Hamilton, ON, Canada L8S 4K1.

REFERENCIAS

1. Bennet, W. M., A. A. Connacher, C. M. Scrimgeour, R. T. Jung, and M. J. Rennie (1990). Euglycemic hyperinsulinemia augments amino acid uptake by human leg tissue during hyperaminoacidemia. Am. J. Physiol. 259 (Endocrinol. Metab. 22): E185-E194

2. Bergmeyer, H. U (1983). Methods of Enzymatic Analysis. New York: Academic, vol. VI, p. 11-18

3. Burke, L. M., G. R. Collier, S. K. Beasley, P. G. Davis, P. A. Fricker, P. Heeley, K. Walder, and M. Hargreaves (1995). Effects of coingestion of fat and protein with carbohydrate feedings on muscle glycogen storage. J. Appl. Physiol. 78: 2187-2192

4. Collier, G., A. McLean, and K. O'Dea (1984). Effect of co-ingestion of fat on the metabolic responses to slowly and rapidly absorbed carbohydrates. Diabetologia 26: 50-54

5. Friedman, J. E., P. D. Neufer, and G. L. Dohm (1991). Regulation of glycogen resynthesis following exercise. Sports Med. 11: 232-243

6. Ivy, J. L (1991). Muscle glycogen synthesis before and after exercise. Sports Med. 11: 6-19

7. Ivy, J. L., A. L. Katz, C. L. Cutler, W. M. Sherman, and E. F. Coyle (1988). Muscle glycogen synthesis after exercise: effect of time of carbohydrate ingestion. J. Appl. Physiol. 64: 1480-1485

8. Ivy, J. L., M. C. Reed, J. T. Brozinick, Jr., and M. J. Reed (1988). Muscle glycogen storage after different amounts of carbohydrate ingestion. J. Appl. Physiol. 65: 2018-2023

9. MacDougall, J. D., S. Ray, N. McCartney, D. Sale, P. Lee, and S. Garner (1988). Substrate utilization during weight lifting (Abstract). Med. Sci. Sports Exerc. 20: S66

10. MacDougall, J. D., G. R. Ward, D. G. Sale, and J. R. Sutton (1977). Muscle glycogen repletion after high-intensity intermittent exercise. J. Appl. Physiol. 42: 129-132

11. McCoy, M., J. Proietto, and M. Hargreaves (1996). Skeletal muscle GLUT-4 and postexercise muscle glycogen storage in humans. J. Appl. Physiol. 80: 411-415

12. Nuttal, F. Q., A. D. Mooradian, M. C. Gannon, C. Billington, and P. Krezowski (1984). Effect of protein ingestion on the glucose and insulin response to a standardized oral glucose load. Diabetes Care 7: 465-470

13. Pascoe, D. D., D. L. Costill, W. J. Fink, R. R. Robergs, and J. Zachwieja (1993). Glycogen resynthesis in skeletal muscle following resistance exercise. Med. Sci. Sports Exerc. 25: 349-354

14. Phillips, S. M., X. Han, H. J. Green, and A. Bonen (1996). Increments in skeletal muscle GLUT-1 and GLUT-4 after endurance training in humans. Am. J. Physiol. 270 (Endocrinol. Metab. 33): E456-E462

15. Robergs, R. A., D. R. Pearson, D. L. Costill, W. J. Fink, D. D. Pascoe, M. A. Benedict, C. P. Lambert, and J. J. Zachwieja (1991). Muscle glycogenolysis during different intensities of weight-resistance exercise. J. Appl. Physiol. 70: 1700-1706

16. Roy, B. D., M. A. Tarnopolsky, J. D. MacDougall, J. Fowles, and K. E. Yarasheski (1997). Effect of glucose supplement timing on protein metabolism after resistance training. J. Appl. Physiol. 82: 1882-1888

17. Spillar, G. A., C. D. Jensen, T. S. Pattison, C. S. Chuck, J. H. Whittman, and J. Scala (1987). Effect of protein dose on serum glucose and insulin response to sugars. Am. J. Clin. Nutr. 46: 474-480

18. Tarnopolsky, M. A., S. A. Atkinson, J. D. MacDougall, A. Chesley, S. Phillips, and H. P. Schwarcz (1992). Evaluation of protein requirements for trained strength athletes. J. Appl. Physiol. 73: 1986-1995

19. Tesch, P. A., B. Colliander, and P. Kaiser (1986). Muscle metabolism during intense, heavy resistance exercise. Eur. J. Appl. Physiol. 55: 362-366

20. Zawadzki, K. M., B. B. Yaspelkis, and J. L. Ivy (1992). Carbohydrate-protein complex increases the rate of muscle glycogen storage after exercise. J. Appl. Physiol. 72: 1854-1859